В настоящей работе описано стимулирующее действие синтетического аморфного диоксида кремния на параметры роста мериклонов Rhododendron roseum (Loisel.) Rehder, размножаемого в культуре in vitro . Целью работы являлось определение оптимального состава питательных сред на основе аморфного кремнезема «Ковелос-Сорб», используемых для клонального микроразмножения рододендронов. Установлено, что оптимальным для стимуляции роста побегов мериклонов Rhododendron roseum (Loisel.) Rehder являлось добавление в питательную среду Андерсона 100 мг/л аморфного диоксида кремния. Для стимуляции размножения и получения большого количества посадочного материала оптимальным являлось использование среды Андерсона, содержащей 50 мг/л аморфного кремнезема. Для укоренения растений-регенерантов Rhododendron roseum (Loisel.) Rehder в культуре in vitro оптимальным являлось использование среды Андерсона, содержащей синтетический аморфный диоксид кремния в количестве 50-150 мг/л в сочетании с ИУК в количестве 1,5 мг/л.
аморфный диоксид кремния «Ковелос-Сорб», клональное микроразмножение
1. Anderson W. C. Propagation of rhododendrons by tissue culture. 1. Development of a culture medium for multiplication of shoots // Comb Proc Int Plant Propag Soc. 1975.
2. Avestan S., Naseri L. A., Hassanzade A., Sokri S. M., Barker A. V. Effects of nanosilicon dioxide application on in vitro proliferation of apple rootstock // Journal of Plant Nutrition. 2016. Vol. 39. № 6. P. 850-855. https://doi.org/10.1080/01904167.2015.1061550
3. Balakhnina T., Borkowska A. Effects of silicon on plant resistance to environmental stresses // International Agrophysics. 2013. Vol. 27. № 2. P. 225-232. https://doi.org/10.2478/v10247-012-0089-4
4. Epstein E. Silicon: its manifold roles in plants // Annals of applied Biology. 2009. Vol. 155. № 2. P. 155-160. https://doi.org/10.1111/j.1744-7348.2009.00343.x
5. Jones K. W. Silicon in banana plants: uptake, distribution and interaction with the disease fusarium wilt. 2014. https://doi.org/10.14264/uql.2014.470
6. Moriguchi T., Kozaki I., Matsuta N., Yamaki S. Plant regeneration from grape callus stored under a combination of low temperature and silicone treatment // Plant cell, tissue and organ culture. 1988. Vol. 15. № 1. P. 67-71. https://doi.org/10.1007/BF00039890
7. Qing W., Huiying H., Jinwen Z. Effect of exogenous silicon and proline on potato plantlet in vitro under salt stress // China Vegetables. 2005. Vol. 9. P. 16-18.
8. Radovet-Salinschi D., Cachita-Cosma D. Testing the regenerative capacity of Solanum tuberosum var. Gersa explants after 24 weeks storage in living collection // Analele Universitatii din Oradea, Fascicula: Ecotoxicologie, Zootehnie si Tehnologii de Industrie Alimentara. 2012. Vol. 11. P. 423-430.
9. Sivanesan I., Park S. W. The role of silicon in plant tissue culture // Frontiers in plant science. 2014. Vol. 5. P. 571. https://doi.org/10.3389/fpls.2014.00571
